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如何操作還原糖檢測(cè)試劑盒(斐林比色法)

更新時(shí)間:2024-04-08      點(diǎn)擊次數(shù):1134


還原糖檢測(cè)試劑盒(斐林比色法)

一、產(chǎn)品簡(jiǎn)介:

斐林試劑(Fehling's Reagent)又稱菲林試劑或裴林試劑,是德國(guó)化學(xué)家Hermann vonFehling 1849年所發(fā)明,斐林試劑與班氏試劑(Benedict's Reagent)相似,均是用來(lái)檢測(cè)還原糖的存在,其原理是與可溶性的還原性糖(葡萄糖、果糖和麥芽糖)在加熱的條件下,能夠生成磚紅色的氧化亞銅沉淀。

還原糖檢測(cè)試劑盒(斐林比色法)主要由酒石酸鈉鉀、硫酸銅等組成,其測(cè)定原理是還原糖具有醛基和酮基,在堿性溶液中煮沸能把斐林試劑中的Cu"*還原成Cu*,使藍(lán)色的斐林試劑脫色,脫色程度與溶液中還原糖含量成正比,在590nm下可用比色法測(cè)定吸光度,查標(biāo)準(zhǔn)曲線即可計(jì)算出樣品中還原糖的含量,主要用于含淀粉食品、飲料、碳酸飲料、肉制品、蜜餞等食品和植物等樣品中還原糖的定量檢測(cè),總糖的含量也可以測(cè)定,但需要提前水解后才能檢測(cè),也可用于還原糖的定性試驗(yàn)。該試劑盒僅用于科研領(lǐng)域,不適用于臨床診斷或其他用途。

 

 

二、產(chǎn)品組成:

名稱

50T

100T

Storage

試劑(A): Glu標(biāo)準(zhǔn)(1mg/ml)

30ml

50ml

4℃

試劑(B):Fehling's Reagent A

50ml

100ml

RT

試劑(C): Fehling's Reagent B

50ml

100ml

RT,避光

試劑(D):甲基紅指示劑

10ml

20ml

RT

試劑(E): pH中和液(10×)

50ml

100ml

RT

 

三、自備材料:

1、試管或離心管

2、錐形瓶、容量瓶、玻璃珠3、水浴鍋或酒精燈

4、果糖、轉(zhuǎn)化糖等還原糖標(biāo)準(zhǔn)(1mg/ml)

5、鹽酸水溶液、氫氧化鈉溶液

6、10%乙酸鉛溶液、飽和硫酸鈉溶液

7、蒸餾水、碘液

8、分光光度計(jì)、比色皿

四、操作步驟(僅供參考)

1、配置斐林試劑:Fehling's Reagent A液和B液等比例混合即成,不可久置。2、配置pH中和液(1×): pH中和液(10×)和水按1:9比例混合即成。

3、樣品中還原糖的提取∶

1)固體樣品(如含淀粉食品、植物樣品等):稱取粉碎或混勻后的試樣10~20g(精確到0.01g ),置于250ml容量瓶,當(dāng)體積接近150ml時(shí)滴加1~3滴甲基紅指示劑,如呈紅色可用pH中和液調(diào)至微黃色;若用風(fēng)干樣品,可稱取3g直接加入容量瓶,加入少量水濕潤(rùn)后再加水至150ml左右加入指示劑和中和液﹔將容量瓶置于80℃的恒溫水浴中保溫30min,期間搖動(dòng)數(shù)次,以便將還原糖充分提取出來(lái)。對(duì)于含蛋白質(zhì)較多的樣品,此時(shí)可加入乙酸鉛溶液除去蛋白質(zhì),至不再產(chǎn)生白色絮狀沉淀時(shí),加入飽和的硫酸鈉溶液除去多余的鉛離子,30min后取出冷卻并定容至刻度,搖勻后取濾液備用。

2)酒料︰稱取混勻后的試樣100g(精確到0.1g ),置于蒸發(fā)皿上,滴加1~3滴甲基紅指示劑,用pH中和液調(diào)至微黃色,在水浴上蒸發(fā)至原體積的1/4后,移入250ml容量瓶,置于80℃的恒溫水浴中保溫30min,期間搖動(dòng)數(shù)次,含蛋白質(zhì)較多的樣品參考上述方法,濾液備用。

3)碳酸飲料︰稱取混勻后的試樣100g(精確到0.1g ),置于蒸發(fā)皿上,在水浴上微微攪拌除去二氧化碳后,移入250容量瓶,用水洗滌蒸發(fā)皿并入容量瓶,加水至刻度,混勻后備用。4)總糖的水解和提取∶稱取植物樣品0.5~3g,剪碎,加入蒸餾水約3ml勻漿,轉(zhuǎn)移至三角燒瓶,用12ml蒸餾水沖洗研磨器2~3次沖洗液也轉(zhuǎn)移至燒瓶中,向三角燒瓶中加入10ml6M鹽酸溶液,搖勻,煮沸30min,并不時(shí)攪拌;取2滴加于小離心管,再滴加1滴碘液,檢查水解是否,如已經(jīng)水解,則不顯示藍(lán)色;水解完畢后冷卻至室溫,滴加6M氫氧化鈉溶液,使溶液pH接近中性;含蛋白質(zhì)較多的樣品參考上述方法,濾液或上清液用蒸餾水定容至100ml,混勻,取10ml,用蒸餾水定容至100ml,搖勻備用。

3、制作還原糖標(biāo)準(zhǔn)曲線:按下表設(shè)置空白管(0號(hào))、梯度標(biāo)準(zhǔn)管(1~6號(hào)),按順序依次加入。

加入物質(zhì)(ml)

0

1

2

3

4

5

6

Glu標(biāo)準(zhǔn)(1mg/ml)

0

0.5

1

1.5

2

2.5

3

蒸餾水

3

2.5

2

1.5

1

0.5

0

葡萄糖含量(mg)

0

0.5

1

1.5

2

2.5

3

斐林試劑

2

將各管混勻后,用沸水浴加熱 15min,冷水或自來(lái)水冷卻,2500r/min離心5~10min,取上清,1cm比色皿,空白管調(diào)零,用分光光度計(jì)測(cè)590nm的吸光度值,以各標(biāo)準(zhǔn)管吸光度為縱坐標(biāo)、對(duì)應(yīng)葡萄糖含量為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

4、樣品還原糖的測(cè)定︰吸取準(zhǔn)備好的還原糖提取液3ml,加入2ml斐林試劑,混勻,沸水浴加熱15min,冷卻、離心、取上清、測(cè)定等操作同標(biāo)準(zhǔn)曲線,空白管調(diào)零后用樣品管的吸光度值帶入回歸方程即可計(jì)算出樣品中還原糖的含量。

 

結(jié)果計(jì)算∶

樣品還原糖含量(%)=m×V×N/(mo×Vs×1000)×100

式中:

m=樣品中還原糖的含量(mg)

V=提取液總體積(ml)

N=稀釋倍數(shù)

mo=樣品質(zhì)量(g)

Vs=測(cè)定時(shí)取用的提取液體積(ml)

1000=單位換算系數(shù)。

:還原糖的定性試驗(yàn)

1、配制斐林試劑工作液︰臨用前,取適量Fehling's ReagentA液和B液等量混合即成,即配即用。

2、向潔凈試管中加入1~2ml待測(cè)樣品。

3、向該試管中加入1ml斐林試劑工作液,充分搖勻。4、將上述混合液置于沸水浴中,并持續(xù)1~3min。

5、觀察試管內(nèi)混合液顏色是否發(fā)生變化,其顏色變化順序應(yīng)為淺藍(lán)色-棕色-磚紅色(沉淀)。

鑒定結(jié)果:

還原性糖(如核糖、葡萄糖、果糖等)

磚紅色沉淀

非還原性糖(蔗糖、淀粉等)

無(wú)顏色變化

注意事項(xiàng):

1、樣品提取液中還原糖濃度過(guò)高時(shí),應(yīng)適當(dāng)稀釋后再行測(cè)定。

2、樣品提取液中還原糖濃度過(guò)低時(shí),可提高樣品的濃度或增加提取液的用量。

3、可合理減少或增加提取液和斐林試劑的用量。

4、斐林試劑的A、B液必須分開(kāi)儲(chǔ)存,臨用前按要求混合使用。

5、斐林試劑B液呈強(qiáng)堿性,需小心操作。

6、6M鹽酸配制∶用市售鹽酸和蒸餾水或去離子水等比例混合即成6M鹽酸,該過(guò)程會(huì)放熱,應(yīng)小心操作,避免傷人。

7、6M氫氧化鈉配制︰稱取氫氧化鈉24g溶解于蒸餾水,補(bǔ)至100ml即成;氫氧化鈉溶于水會(huì)放熱,應(yīng)小心操作,避免傷人。

8、色素對(duì)糖類的測(cè)定存在干擾,當(dāng)提取液顏色較深時(shí),應(yīng)事先脫色后再進(jìn)行測(cè)定,不同樣品脫色方法和脫色劑用量不同,需自行查找文獻(xiàn)資料,5%活性炭可用于紅葡萄酒的脫色。9、為了您的安全和健康,請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。

有效期∶6個(gè)月有效。


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